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西藏芜菁防治缺氧性肺水肿和脑水肿的作用及机制研究

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西藏芜菁防治缺氧性肺水肿和脑水肿的作用及机制研究
论文目录
 
摘要第1-9页
Abstract第9-13页
主要英文缩写表第13-19页
第一章 绪论第19-35页
  1.1 高原肺水肿(HAPE)第19-24页
    1.1.1 肺动脉高压第20-22页
      1.1.1.1 交感神经过度活化第20-21页
      1.1.1.2 一氧化氮(NO)合成不足第21-22页
      1.1.1.3 内皮素-1(ET-1)过度合成第22页
    1.1.2 肺气血屏障通透性增加第22-23页
    1.1.3 肺泡清除液体的功能障碍第23-24页
  1.2 急性高原反应(AMS)与高原脑水肿(HACE)第24-28页
    1.2.1 缺氧条件下脑血流动力学和流变学的变化第25-26页
    1.2.2 缺氧条件下细胞因子和炎症因子的变化第26-28页
  1.3 急性高原病(AHAI)的预防措施第28-32页
    1.3.1 碳酸酐酶抑制剂(如乙酰唑胺)第28页
    1.3.2 糖皮质激素(如地塞米松和布地奈德)第28-29页
    1.3.3 β_2肾上腺素能受体激动剂(如硝苯地平和沙美特罗)第29-30页
    1.3.4 磷酸二酯酶抑制剂(如西地那非和他达拉非)第30页
    1.3.5 镇痛剂(如布洛芬)第30-31页
    1.3.6 抗氧化剂(如银杏叶和马齿苋等植物提取物)第31-32页
  1.4 本课题目的意义及主要研究内容第32-35页
第二章 西藏芜菁有效部位和活性成分预防缺氧性肺水肿的动物试验研究第35-55页
  2.1 引言第35页
2.2、材料、试剂与设备第35-37页
    2.2.1 试验材料与实验动物第35-36页
    2.2.2 试剂与耗材第36页
    2.2.3 主要仪器与设备第36-37页
  2.3 试验方法第37-42页
    2.3.1 n-bu-TT中对香豆酸(CA)及其葡萄糖苷(CAG)的含量测定第37页
    2.3.2 动物试验设计第37-41页
    2.3.3 其他相关生化指标的分析测试第41页
    2.3.4 肺组织学观察及超微结构分析第41页
    2.3.5 肺组织紧密结合蛋白(Occludin)检测第41-42页
    2.3.6 数据处理与统计分析第42页
  2.4 结果与讨论第42-54页
    2.4.1 n-bu-TT和CA对缺氧性肺水肿的预防作用第42-46页
    2.4.2 n-bu-TT和CA对血浆NO和ET-1水平的影响第46-47页
    2.4.3 n-bu-TT和CA对炎症因子的影响第47-48页
    2.4.4 n-bu-TT和CA对谷胱甘肽抗氧化系统的影响第48-50页
    2.4.5 实验小鼠肺组织的苏木精-伊红染色观察结果第50-51页
    2.4.6 实验小鼠肺组织的电镜观察结果第51-52页
    2.4.7 n-bu-TT和CA对肺组织Occludin蛋白表达水平的影响第52-54页
  2.5 本章小结第54-55页
第三章 西藏芜菁有效部位和活性成分预防缺氧性脑水肿的动物试验研究第55-73页
  3.1 引言第55页
3.2、材料、试剂与设备第55-56页
    3.2.1 试验材料与实验动物第55-56页
    3.2.2 试验试剂与耗材第56页
    3.2.3 主要仪器与设备第56页
  3.3 试验方法第56-61页
    3.3.1 动物试验设计第56-60页
    3.3.2 其他相关生化指标的分析测试第60页
    3.3.3 大脑皮层组织学观察及超微结构分析第60页
    3.3.4 大脑皮层中Occludin蛋白水平检测第60页
    3.3.5 数据处理与统计分析第60-61页
  3.4 结果与讨论第61-72页
    3.4.1 n-bu-TT和CA对缺氧性脑水肿的预防作用第61-63页
    3.4.2 n-bu-TT和CA对脑组织Na~+-K~+-ATPase和线粒体膜电位的影响第63-65页
    3.4.3 n-bu-TT和CA对脑组织炎症因子的影响第65-66页
    3.4.4 n-bu-TT和CA对抗氧化酶活性的作用第66-67页
    3.4.5 实验小鼠大脑皮层的苏木精-伊红染色观察结果第67-68页
    3.4.6 实验小鼠大脑皮层的电镜观察结果第68-70页
    3.4.7 n-bu-TT和CA对大脑皮层Occludin蛋白表达水平的影响第70-72页
3.5、本章小结第72-73页
第四章 对香豆酸预防缺氧性肺水肿的分子机制研究第73-94页
  4.1 引言第73页
4.2、材料、试剂与设备第73-75页
    4.2.1 试验材料第73页
    4.2.2 试验试剂与耗材第73-74页
    4.2.3 主要仪器与设备第74-75页
  4.3 试验方法第75-83页
    4.3.1 肺微血管内皮细胞的培养第75-76页
    4.3.2 MTT法测定细胞活力第76-77页
    4.3.3 透射电镜观察细胞超微结构的变化第77-78页
    4.3.4 细胞培养上清液中NO和ET-1的释放第78页
    4.3.5 qRT-PCR法检测细胞中相关基因的表达水平第78-81页
    4.3.6 qRT-PCR法检测肺组织中相关基因的表达水平第81页
    4.3.7 Western blot法检测肺组织中相关蛋白的表达水平第81-83页
    4.3.8 数据处理与统计分析第83页
  4.4 结果与讨论第83-93页
    4.4.1 n-bu-TT和CA对缺氧条件下肺微血管内皮细胞活力的影响第83-84页
    4.4.2 内皮细胞的电镜观察结果第84-85页
    4.4.3 CA对内皮细胞培养上清液中NO和ET-1水平的影响第85-87页
    4.4.4 CA对内皮细胞中HIF-1α、VEGF、iNOS、eNOS和ET-1基因表达的影响第87-89页
    4.4.5 CA对肺组织中HIF-1α、VEGF、iNOS、eNOS和ET-1基因表达的影响第89-90页
    4.4.6 CA对肺组织中HIF-1α、VEGF、iNOS、eNOS、ET-1蛋白表达的影响第90-93页
  4.5 本章小结第93-94页
第五章 对香豆酸预防缺氧性脑水肿的分子机制研究第94-108页
  5.1 引言第94页
5.2、材料、试剂与设备第94-95页
    5.2.1 试验材料第94页
    5.2.2 试验试剂与耗材第94-95页
    5.2.3 主要仪器与设备第95页
  5.3 试验方法第95-99页
    5.3.1 脑星形胶质细胞培养第95页
    5.3.2 MTT法测定细胞活力第95-96页
    5.3.3 透射电镜观察细胞超微结构的变化第96-97页
    5.3.4 qRT-PCR法检测细胞中相关基因的表达水平第97-98页
    5.3.5 qRT-PCR法检测大脑皮层中相关基因的表达水平第98页
    5.3.6 Western blot法检测大脑皮层中相关蛋白的表达水平第98-99页
    5.3.7 数据处理与统计分析第99页
  5.4 结果与讨论第99-107页
    5.4.1 n-bu-TT和CA对缺氧条件下脑星形胶质细胞活力的影响第99-100页
    5.4.2 星形胶质细胞的电镜观察结果第100-101页
    5.4.3 CA对星形胶质细胞中HIF-1α、VEGF、ET-1和AQP4基因表达的影响第101-103页
    5.4.4 CA对大脑皮层中HIF-1α、VEGF、ET-1和AQP4基因表达的影响第103-105页
    5.4.5 CA对大脑皮层中HIF-1α、VEGF、ET-1和AQP4蛋白表达的影响第105-107页
  5.5 本章小结第107-108页
第六章 结论与展望第108-110页
  6.1 主要结论第108页
  6.2 创新点第108-109页
  6.3 展望第109-110页
参考文献第110-125页
致谢第125-126页
作者简历第126页
读博期间参与的科研项目第126-127页
读博期间相关成果第127页

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