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草酸诱导哈密瓜果实采后耐冷性的作用机理

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草酸诱导哈密瓜果实采后耐冷性的作用机理
论文目录
 
摘要第1-9页
Abstract第9-15页
缩略语表(Abbreviation)第15-16页
第一章 绪论第16-31页
  1.1 哈密瓜果实采后冷害症状和控制技术第16-18页
    1.1.1 采后冷害症状第16-17页
    1.1.2 采后冷害控制技术及相关机理第17-18页
  1.2 果实对低温胁迫的响应第18-25页
    1.2.1 膜组分的改变第18-19页
    1.2.2 活性氧清除系统的变化第19-21页
    1.2.3 渗透调节物质的变化第21-23页
    1.2.4 低温信号转导第23-25页
  1.3 果实低温冷害的转录调控机理第25-27页
  1.4 草酸对果实采后生理活性的影响第27-29页
    1.4.1 草酸处理对果实采后成熟进程的影响第27-28页
    1.4.2 草酸处理对果实采后抗冷性和抗病性的影响第28-29页
  1.5 研究目的意义及主要研究内容第29-31页
    1.5.1 研究目的与意义第29-30页
    1.5.2 主要研究内容第30-31页
第二章 草酸对哈密瓜果实采后冷害及品质的影响第31-39页
  2.1 材料与方法第31-33页
    2.1.1 试验材料第31-32页
    2.1.2 处理方法第32页
    2.1.3 测定方法第32-33页
    2.1.4 数据统计与分析第33页
  2.2 结果与分析第33-37页
    2.2.1 草酸对哈密瓜果实冷害症状和冷害指数的影响第33-34页
    2.2.2 草酸对哈密瓜果实呼吸速率和细胞膜渗透率的影响第34-35页
    2.2.3 草酸对哈密瓜果实抗坏血酸、硬度和可溶性固形物含量的影响第35-36页
    2.2.4 草酸对哈密瓜果实可滴定酸和叶绿素含量的影响第36-37页
  2.3 讨论第37-38页
  2.4 本章小结第38-39页
第三章 草酸诱导哈密瓜采后耐冷性的转录组学分析第39-65页
  3.1 材料与方法第40-44页
    3.1.1 试验材料第40页
    3.1.2 处理方法第40页
    3.1.3 O_2~-产生速率、MDA、脯氨酸及可溶性糖含量的测定第40-41页
    3.1.4 果实测序文库构建与Illumina测序第41页
    3.1.5 总RNA提取及质量检测第41页
    3.1.6 cDNA文库构建及其质量检测第41-42页
    3.1.7 生物信息分析第42-44页
  3.2 结果与分析第44-61页
    3.2.1 草酸对哈密瓜O_2~-产生速率、MDA、脯氨酸及可溶性糖含量的影响第44-45页
    3.2.2 转录组测序数据质量分析第45-46页
    3.2.3 哈密瓜转录组的Unigene长度分布及质量统计第46-47页
    3.2.4 哈密瓜转录组的Unigenes功能注释及COG分类第47-48页
    3.2.5 CDS、SNP和SSR预测第48-50页
    3.2.6 差异基因概况及GO富集、KEGG代谢通路富集分析第50-55页
    3.2.7 活性氧(ROS)清除相关酶的差异基因表达分析第55-57页
    3.2.8 膜脂氧化相关酶的差异基因表达分析第57-58页
    3.2.9 脯氨酸合成相关酶的差异基因表达分析第58-60页
    3.2.10 糖代谢相关酶的差异基因表达分析第60-61页
  3.3 讨论第61-64页
  3.4 本章小结第64-65页
第四章 草酸对哈密瓜采后抗氧化代谢的影响第65-81页
  4.1 材料与方法第65-70页
    4.1.1 试验材料和处理方法第65页
    4.1.2 冷害指数测定第65页
    4.1.3 膜渗透率和丙二醛(MDA)含量测定第65-66页
    4.1.4 H_2O_2的含量和O_2~-产生速率测定第66页
    4.1.5 还原型与氧化型谷胱甘肽含量测定第66页
    4.1.6 还原型与氧化型抗坏血酸含量测定第66页
    4.1.7 POD,CAT,SOD和APX活性测定第66-67页
    4.1.8 GR,DHAR和MDHAR活性测定第67页
    4.1.9 可溶性蛋白含量的测定第67页
    4.1.10 RNA提取,cDNA合成与荧光定量PCR(Q-PCR)引物分析的测定第67-70页
    4.1.11 数据处理与统计分析第70页
  4.2 结果与分析第70-77页
    4.2.1 草酸对哈密瓜果实冷害症状和冷害指数的影响第70-71页
    4.2.2 草酸对哈密瓜膜渗透率和MDA含量的影响第71-72页
    4.2.3 草酸对哈密瓜H_2O_2的含量和O_2~-的产生速率影响第72-73页
    4.2.4 草酸对哈密瓜GSH、GSSG含量及其比值影响第73页
    4.2.5 草酸对哈密瓜AsA、DHA含量及其比值影响第73-74页
    4.2.6 草酸对哈密瓜POD,CAT,SOD和APX活性的影响第74-75页
    4.2.7 草酸对哈密瓜GR、DHAR、MDHAR活性的影响第75-76页
    4.2.8 草酸对哈密瓜CmAPX,CmGR和CmPOD表达的影响第76-77页
  4.3 讨论第77-80页
  4.4 本章小结第80-81页
第五章 草酸对哈密瓜采后膜脂代谢的影响第81-91页
  5.1 材料与方法第81-83页
    5.1.1 材料与处理第81页
    5.1.2 脂肪酸组成及含量的测定第81-82页
    5.1.3 脂氧合酶活性(LOX)的测定第82页
    5.1.4 可溶性蛋白质含量的测定第82页
    5.1.5 PLD活性的测定第82页
    5.1.6 Ca~(2+)含量的测定第82页
    5.1.7 RNA提取,cDNA合成与荧光定量PCR (Q-PCR)引物分析的测定第82-83页
    5.1.8 数据处理与统计分析第83页
  5.2 结果与分析第83-88页
    5.2.1 草酸对哈密瓜饱和脂肪酸含量的影响第83-84页
    5.2.2 草酸对哈密瓜不饱和脂肪酸含量的影响第84-86页
    5.2.3 草酸对哈密瓜脂肪酸不饱和指数和不饱和度的影响第86页
    5.2.4 草酸对哈密瓜脂氧合酶(LOX)和磷脂酶D(PLD)活性及Ca~(2+)含量的影响第86-87页
    5.2.5 草酸处理对哈密瓜CmLOX和CmPLD表达的影响第87-88页
  5.3 讨论第88-90页
  5.4 本章小结第90-91页
第六章 草酸对哈密瓜采后脯氨酸代谢的影响第91-100页
  6.1 材料与方法第91-93页
    6.1.1 试验材料与方法第91页
    6.1.2 游离脯氨酸含量的测定第91页
    6.1.3 脯氨酸代谢关键酶P5CS活性的测定第91-92页
    6.1.4 脯氨酸代谢关键酶OAT活性的测定第92页
    6.1.5 脯氨酸代谢关键酶ProDH活性的测定第92页
    6.1.6 CmP5CS、CmOAT和CmProDH和转录因子Cm-CBF1和Cm-CBF3表达量的测定第92-93页
    6.1.7 数据处理与统计分析第93页
  6.2 结果与分析第93-97页
    6.2.1 草酸对哈密瓜脯氨酸含量的影响第93-94页
    6.2.2 草酸对哈密瓜P5CS、OAT和ProDH活性及基因表达的影响第94-96页
    6.2.3 草酸对哈密瓜转录因子Cm-CBF1和Cm-CBF3表达的影响第96-97页
  6.3 讨论第97-99页
  6.4 本章小结第99-100页
第七章 结论第100-102页
  7.1 结论第100页
  7.2 主要创新点第100-101页
  7.3 展望第101-102页
参考文献第102-120页
博士期间学术成果第120-121页
致谢第121页

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